质粒提取过程如下：
     （1）将琼脂培养板上的阳性单菌落，移至3mL LB液体培养基中（含Amp或Kana），或将大肠杆菌的甘油菌按1：30的比例接到LB液体培养基中，37℃剧烈摇荡培养过夜；
     （2）取500μL菌体，与40%甘油等体积混合，-70℃保存，剩余的菌体用于质粒的提取；
     （3）取出1.5-2mL菌液移至Eppendorf管中，12000rpm，4℃离心30s，弃上清，用1mL STE悬浮菌体沉淀，洗涤菌体，再离心回收菌体；
     （4）再重复用STE漂洗菌体，离心后，去尽上清液；
     （5）将细菌沉淀悬浮于100μL冰预冷的溶液I中，强烈振荡混匀；
     （6）加入200μL新配制的溶液II，轻轻颠倒离心管5次以混合内容物，不要强烈振荡，放置冰上3min左右（根据不同菌株，可适当缩短）；
     （7）加入150μL冰预冷的溶液III，轻轻颠倒5次，混匀，置于冰上5min；
     （8）15000rpm，4℃离心5min，将上清转移到另一个离心管中；
     （9）向上清中加入等体积的酚：氯仿（1：1），混匀，15000rpm离心5min，将上清转移到另一个离心管中；
     （10）加入2倍体积冰预冷的无水乙醇，室温放置2min，沉淀双链DNA；
     （11）15000rpm，4℃离心5min；
     （12）倒掉上清，使液体尽量流尽，空气中干燥沉淀；
     （13）用20μL含有RNaseA的TE缓冲液溶解核酸沉淀，瞬时离心，混匀，贮存于-20℃冰箱中备用。